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痉挛型脑性瘫痪(SCP)大鼠模型【简介】痉挛性脑瘫指发育异常引起的运动和感觉功能落后，造成肢体肌张力增高、腱反射亢进等一系列综合征。本实验利用脑立体定位解剖图谱,对大鼠的锥体束部位进行精确的立体定位,通过微量注射器对大脑锥体束所在部位注射无水乙醇造成锥体束坏死,的模拟了痉挛型脑瘫的解剖学及病理改变,术后大鼠产生明显的屈曲痉挛症状,且屈肌肌张力增高,症状和体持续时间较长,稳定性良好。从而建立一种可复制性良好且痉挛持续时间较长的稳定的大鼠痉挛型脑瘫动物模型,为进一步深入的探究痉挛型脑瘫的基础研究和临床诊治打下基础【目的】痉挛型脑性瘫痪(SCP)大鼠模型建立【动物】SPF级SD大鼠，雄性，周龄6~8W，体重：200~250g【方法】1、大鼠麻醉，颅顶脱毛备皮；2、大鼠脑定位仪固定大鼠，颅顶正中切口，长度约2cm开口暴露前囟及矢状缝；3、缝线将皮肤左右分开固定，前囟后10mm、矢状缝左侧；4、微量注射器移至开孔处修正骨孔，注射器垂直向颅内插入，缓慢注射无水乙醇15ul，注射完移除注射器，棉球压迫止血；5、缝合创口后维持25°体温，等待苏醒，观察大鼠状态。【观察】术后3天模型大鼠摄食减少、右侧肢体跛行、右前肢不负重、右前肢及右前爪屈曲痉挛明显。细胞增殖与细胞凋亡、细胞周期等是研究的重要表型，是分子生物学和药理学研究解决的问题之一。湖北疾病模型科研技术服务外包

转录组和m6A分析显示精子发生相关基因的表达和选择性剪接发生了改变[19]。YTHDC2可促进靶基因的翻译效率，并降低其mRNA的丰度，在精子发生过程中起关键作用。当减数分裂开始时YTHDC2表达上调，YTHDC2敲除小鼠的生殖细胞没有经过偶线期的发育导致小鼠不育[20]。在DNA损伤反应中，METTL3可促进DNA聚合酶κ（Polκ）与核酸剪切修复途径快速定位到UV引起的DNA损伤位点，当缺失METTL3时，细胞无法迅速修复UV照射引起的突变，并且对UV照射更加敏感[25]。在淋巴细胞性小鼠过继转移模型中，Mettl3缺陷通过影响mRNAm6A修饰，降低SOCS家族mRNA衰减，增加mRNA和蛋白表达水平，从而抑制IL-7介导的STAT5活性和T细胞内稳态增殖和分化，进而抑制肠炎的发生[21]。在肝中，METTL14通过调控pri-miRNA的m6A修饰，影响MiR-126的生成加工，从而抑制肝的转移[22]。在乳腺细胞中，低氧刺激能促进依赖低氧诱导因子HIF的ALKBH5的表达，而ALKBH5过表达降低了NANOGmRNA的m6A修饰，从而稳定mRNA提高NANOG的表达水平，终增加乳腺干细胞所占的比例[23]。此外，低氧诱导乳腺细胞中依赖ZNF217的NANOG和KLF4的mRNAm6A甲基化抑制，且ALKBH5敲除降低免疫缺陷小鼠乳腺的肺转移[24]。在肺中。上海豚鼠科研技术服务实验室了解更多关于动物模型的问题欢迎来电咨询，如您需要，竭诚为您服务。

是整体甲基化进程所必须的[2]。FTO是ALKB家族的成员，作为个被发现的去甲基酶，可影响剪切因子SRSF2的RNA结合能力，进而调控pre-mRNA的剪切加工过程[3]。目前已发现FTO调节异常与肥胖、大脑畸形和生长迟缓相关，揭示m6A可能对这些疾病具有重要的调节功能[4-6]。ALKBH5是ALKB家族中被发现具有去甲基作用的另一个成员，以RNaseA敏感的方式与核小斑共定位，它可直接催化m6A-甲基化腺苷去除甲基而不同于FTO的氧化去甲基化[7].此外，ALKBH5和它的去甲基化活性影响新生mRNA合的成和剪切效率[7]，且ALKBH5敲除雄性小鼠表现出精子发生异常，这可能是精子发生相关基因表达改变的结果[7]。m6AmRNA修饰执行其功能主要通过两个途径：精细调控甲基化转录本的结构，以阻止或诱使蛋白-RNA相互作用；或被直接由m6A结合蛋白识别，诱发续反应。目前一类含有YTH功能结构域的蛋白被鉴定为m6A修饰的结合蛋白。其中YTHDF1,YTHDF2,YTHDF3，YTHDC1和YTHDC2己被证实是ｍ６Ａ的结合蛋白.YTHDF1主要影响ｍ６Ａ修饰基因的翻译，YTHDF2主要影响ｍ６Ａ修饰基因的降解，而YTHDC1结合ｍ６Ａ修饰的基因影响其剪接。HNRNPC是一种丰富的核RNA结合蛋白，参与pre-mRNA的加工[8]。

采用opti-MEM和Lipo3000分别转染含有目的基因的pMSCV-eGFP、VSV、GAG质粒及对照载体，每皿加入脂质体-质粒转染混悬液按购买脂质体相关说明书操作定量。继续培养24h。2)24小时后，将培养基更换为新鲜的DMEM完全培养基，放进细胞培养箱继续培养48~72h。3)48~72h后收集上层培养液，并过μm滤膜，采用ELISA法对所获得的慢载体进行滴度测定。如不及时使用可以冻存于-80℃。3、慢转染1)转染前1天将细胞接种6孔培养板，时细胞的融合率约为50%，前需换液，加入1mLDMEM完全培养基。2)冰浴融化后加入相应体积的液及聚凝胺（Polybrene），混匀后放入37℃孵箱中继续培养3)4h后补充1mL培养基，14h后换液（24h内换液即可）。4)72h后用倒置显微镜观察荧光，监测效率，出现较多荧光时将等量的转染细胞和未转染细胞分别加入等浓度Puromycin（Puromycin或其他筛选浓度需要事先摸索）。5)待未转染细胞全部死亡并且可观察到满意荧光量时，降低Puromycin浓度培养。也可以挑去单克隆细胞株进行进一步培养，以得到满意的稳定表达目的基因的细胞株。6)使用qRT-PCR和Westernblot的方法检测目的基因的表达量和蛋白水平是否显著提高。7)由此可得三组细胞株：a.正常细胞株；b.空载载体的细胞株。细胞器是细胞内的各种功能结构，如线粒体、内质网、高尔基体等，它们各自承担着不同的生理功能。

METTL3能够促进肺腺细胞的生长、生存和侵袭，但还不清楚它是否作为m6A调节器或效应器发挥作用[25]。在急性髓细胞白血病（AML）患者中，m(6)A调控基因的突变或拷贝数变化与TP53突变存在密切联系，且m(6)A调控基因的改变与AML不良预相关[26]。此外，FTO在AML中高表达，它通过降低mRNA转录本中的m(6)水平，调节ASB2和RARA等靶点的表达，增强了白血病基因介导的细胞转化和白血病形成，并抑制全反式维甲酸(ATRA)诱导的AML细胞分化[27]。在脂肪形成过程中，FTO表达与m6A水平成负相关，促进脂肪形成[3]。在胶质细胞瘤样细胞中，ALKBH5通过lncRNAFOXM1介导FOXM1基因pre-mRNA上的m6A修饰维持胶质瘤细胞的成瘤性[28]。此外，甲基转移酶METTL3或METTL14的敲除，能够改变m6A的富集和ADAM19的表达，极大地促进了胶质瘤细胞的生长、自我更新和形成[29]。图2m6ARNA修饰和介导的功能[30]m6A的研究方向主要是通过研究m6A修饰相关的甲基化、去甲基化酶和识别蛋白的功能，进而研究m6A修饰的生物学功能和作用机制：一般通过敲除m6A酶分子，研究下游功能基因分子的表达和m6A甲基化情况，通过介导相关基因异常（可变剪切、稳定性、翻译、miRNA调控）影响细胞表型和功能特征。实验干货 | 常用分子生物学技术原理.宁夏血液科研技术服务分离

流式细胞周期检测试剂盒是一种用于研究细胞周期的重要工具。湖北疾病模型科研技术服务外包

代谢组学的研究对象大都是相对分子量在1000以内的小分子物质，因此常用的血液样本在取样后，应小心操作，防止溶血，尽快分离出血清，分置于温环境下保存。由于用于理实验的动物采集相对其他样品的采集，操作更繁琐，在处理过程中许多细节容易忽略，造成数据不完美（甚至不能用）。因此接下来将重点介绍样品采集的注意事项及其固定。样品采集注意事项应新鲜，操作时间尽可能短，否则细胞发生死后变化、自融及现象。是动物心脏还在跳动时采集，样本取出后在5分钟以内置于固定液内，避免长时间暴露在空气环境中。块尽量小而薄。块的厚度以不超过5mm为宜，较为理想的厚度为2mm左右，主要目的是使固定液迅速而均匀的渗入块内部。勿使块受挤压。在采集过程中，应尽量选择较为锋利的手术，如手术刀片等，避免操作过程中挤压挫伤标本。挤压过的均不可用。固定液的量一般以块大小的20倍为宜，能够在容器内自由移动。尽量保持的原有形态。新鲜经固定后，或多或少产生收缩现象（如胃肠），为此可将展平，以尽可能维持原形。保持清洁。块上如有血液、污物、粘液、食物、粪便等，可用生理盐水冲洗，然后再入固定液，但要注意防止损伤。要熟悉采集部位。要能准确的按解剖部位采集。湖北疾病模型科研技术服务外包